BIOtecnia Vol. 12, Núm. 3 (2010) > Fimbres-Olivarría

 CRECIMIENTO Y BIOMASA DE Dunaliella sp. CULTIVADA EN MEDIOS LIMITANTES EN NITRÓGENO

Diana Fimbres-Olivarría, Lauro Rufino Mercado-Castillo, Álvaro Murguía-López, José Antonio López-Elías

 

Resumen

Las microalgas se han empleado en la alimentación del ser humano y en la acuacultura para alimentar diversos organismos marinos, es por ello que el objetivo de la investigación fue evaluar la producción de biomasa de Dunaliella sp. en medios limitantes en nitrógeno. Los cultivos se realizaron en garrafones con 15 L, por cuadriplicado en condiciones de laboratorio en medios limitantes de nitrógeno (f/4, f/6 y f/8) en comparación con un medio control (f/2). Los cultivos fueron crecidos por 10 días con aireación e iluminación constante, diariamente se realizaron conteos celulares, medición de luz, temperatura y pH. La biomasa fue determinada en la fase logarítmica final y estacionaria. Se encontró que las concentraciones celulares fueron mayores en el medio control con un promedio de 1.2 x 106 cél/mL, mientras que en los medios limitantes (f/6 y f/8) se alcanzó en promedio una concentración entre 0.5 y 0.3 x 106 cél/mL. La producción de biomasa aumentó de 100 a 436 pg/cél conforme disminuyó la cantidad de nitrógeno en el cultivo. Se concluye que en los medios limitantes de nitrógeno, las células incrementan su biomasa en comparación con el control.

Palabras clave

medios de cultivo; Dunaliella; biomasa; medimitante en nitrógenoo li

Texto completo:

PDF

Referencias

Abu-Rezq, T. S., Al-Hooti, S. y Dangly, A. J. 2010. Optimum culture conditions required for the locally isolated Dunaliella salina. J.Algal Biomass Utln, 1(2): 12-19.

Andersen, R.A. 2005. Algal culturing techniques. Elsevier Academic Press, USA, 578 pp. Ben-Amotz, A. y Avron, M. 1989. The biotechnology of mass culturing Dunaliella for products of commercial interest. En Algal and Cyanobacterial Biotechnology, ed. R. C. Creswell, T. A. Rees & N. Shah. Longman Scientific and Technical Press U.K., 90-114.

Bermudez, J.L., Lodeiros, C. y Morales, E. 2002. Biomass production of the marine microalga Chroomonas sp. as a function of pH, luminic

intensity, and salinity. Bol. Invemar. 31(1): 167-185.

Fabregas, J., Herrero, C., Cabezas, B. y Abalde, J. 1985. Mass culture and biochemical variability of the marine microalgae Tetraselmis suecica Kylin (Butch) with high nutrient concentrations. Aquaculture 49:231-244.

García-González, M., Manzano, J. C., Moreno, J. y Guerrero, M. G. 2000. Biotecnología del cultivo de Dunaliella salina en el litoral andaluz. Spain: Pesca y Acuicultura, Consejería de Agricultura y Pesca, 163 pp.

García-González, M., Cañavate, J.P., Anguis V., Prieto, A. y Manzano, J.C. 2005. Desarrollo y evaluación de la producción de beta-caroteno por Dunaliella salina en la Bahía de Cádiz. Libro de Actas del IX Congreso Nacional de Acuicultura, 347-352.

Guevara, M., Lodeiros, C. y Gomez, O. 2005. Carotenogénesis de cinco cepas del alga Dunaliella sp. (Chlorophyceae) aisladas de lagunas hipersalinas de Venezuela. Rev. Biol. Trop. 53(3-4):331-337.

Guillard, R.L. y Ryther, J. H. 1962. Studies on marine planktonic diatoms I. Cyclotella nana Husted and Detonula confervacea (Cleve) Gran. Can. J. Microbiol. 8:229-239.

Hellebust, J. A. y Iftikhar, A. 1984. Osmoregulation in the Extremely Euryhaline Marine Microalga Chlorella autotrophica. Plant Physiol. 74, 1010-1015.

Hernández-Nazario, L., Quintana-Cabrales, M.M., Morris-Quevedo, H. y Fernández-González, M. 1999. Contenido de algunas vitaminas en cultivos de microalga Chlorella sp. Rev. Cubana Aliment. Nutr. 13(1):9-13.

López-Sánchez, A. L. 1999. Variación estacional de la producción de biomasa y de la calidad de la composición bioquímica de dos especies de microalgas cultivadas en laboratorio e invernadero. Tesis de licenciatura. Departamento de Ciencias Químico Biológicas. Universidad de Sonora. 123.

Miranda, M.S., Cintra, R.G., Barros, S.B., Mancini-Filho,J. 1998. Antioxidant activity of the

BIOtecnia Vol. 11, Núm. 3 (2009) > Silveira-Gramont

SITUACIÓN DE LA PRODUCCIÓN DE CÁRTAMO (Carthanus tinctorius L.) EN SONORA, MÉXICO Y FACTORES ASOCIADOS

María Isabel Silveira-Gramont, María Lourdes Aldana-Madrid, Luis Ángel Medina-Juárez, Alfredo Serrano-Esquer

 

Resumen

Se realizo una revisión sistemática de las bases de datos documentales y bibliográficas sobre el cártamo en Sonora y en México. Los resultados indican que la producción comercial de cártamo en Sonora ha mostrado una gran variabilidad, asociada con los precios, con la situación mundial de producción, y con problemas de enfermedades y plagas del cultivo. Aun con la promoción gubernamental del cultivo, características no favorables como la susceptibilidad a enfermedades y plagas de las variedades adaptadas para Sonora y la oferta/demanda variable del cártamo, generan desaliento entre los productores. Hay varias publicaciones sobre mejoramiento de variedades, métodos de siembra, manejo y condiciones del cultivo en Sonora y sobre calidad del aceite, pero estas son pocas en comparación con los años que lleva el cultivo instalado en la región. Mas escasas aun son las investigaciones sobre la pasta de cártamo, así como sobre productos nutraceuticos derivados del aceite, los cuales tienen cierta demanda en otros países.

Palabras clave

Cártamo; producción de cártamo; oleaginosas; investigación en cártamo.

Texto completo:

PDF

Referencias

ASERCA. 2008. Programa de Apoyos Directos al Campo. Claridades Agropecuarias 165, 19-71. Apoyos y Servicios a la Comercialización Agropecuaria, Revista “Claridades Agropecuarias”, México, D.F.

ASERCAa. 2000. El Cártamo en Procampo. Claridades Agropecuarias 86, 32-33. Apoyos y Servicios a la Comercialización Agropecuaria, Revista “Claridades Agropecuarias”, México, D. F.

ASERCAb. 2000. Oferta y Demanda Mundiales de Cártamo. Claridades Agropecuarias 86, 42-44. Apoyos y Servicios a la Comercialización Agropecuaria, Revista “Claridades Agropecuarias”, México, D. F.

ASERCA. 1994. La producción de cártamo en México. Claridades Agropecuarias 11, 4-14. Apoyos y Servicios a la Comercialización Agropecuaria, Revista “Claridades Agropecuarias”, México, D.F.

ANIAME. 2008. Tecnología para producir oleaginosas en México. Presentación ante INIFAP en los 50 años de la Asociación Nacional de Industriales de Aceites y Mantecas Comestibles de México (ANIAME). En: www.aniame.com.mx/forodeanalisis/conferencias/primer_sesion02_pedro_brajcich.pdf

Camacho-Casas, M.A. 2000. Descripción de las variedades desarrolladas por el CIANO, triticale, cebada, maíz, soya, cártamo, ajonjolí y garbanzo. Publicación especial. Boletín CIANO 39, p. 44. INIFAP, Centro de Investigación Regional del Noroeste, Campo Experimental Valle del Yaqui, Ciudad Obregón, Sonora, México.

Camarillo, P.M., Valenzuela, P.J.A., Guzmán, R.S.D. 2002. Guía para producir cártamo en los Valles de Mexicali, Baja California y San Luis

Rio Colorado, Sonora. Folleto para productores 35. INIFAP, Centro de Investigación Regional del Noroeste, Campo Experimental Valle de Mexicali. Mexicali, Baja California, México.

Cervantes-Martínez, J.E., Rey-Ponce, M., Velázquez-Cágal, M. 2001. Evaluation of accessions from world collection of safflower for Alternaria incidence and seed oil content. Presented at Fifth International Safflower Conference Proceedings. Germplasm Abstracts. Sidney, Montana, USA, Julio 23-27.

Dennis, R.E., Rubis, D.D. 1966. Safflower Production in Arizona. University of Arizona, Extension Service & Agricultural Experimental Station, Bulletin A-47, 1-24. Tucson, AZ., U.S.A.

INEGIa, 1995-2007. Anuario Estadístico del Estado de Sonora. Ediciones 1998 al 2007. Instituto Nacional de Estadística, Geografía e Informática. Aguascalientes, Ags., México.

Kaffka, S.R., Kearney, T.E., Knowles P.D., Millar, M.D. 2000. Safflower production in California. UC Agriculture & Natural Resources Publication 21565, DANR Communication Services, University of California, Oakland, CA, USA.

Kamal-Eldin, A. and Appelquist, L. 1996. The Chemistry and antioxidant properties of tocopherols and tocotrienols, Lipids. 31 (7), 671-701.

Knowles, P.F. 1989. Safflower, In: Oil crops of the world. G. Röbbelen, R.K. Downe, A. Ashri, (Ed.), p. 363-374. McGraw-Hill, New York.

Knowles, P.F. 1991. Global perspectives of safflower. In: Proceedings Second International Safflower Conference, V. Ranga Rao, M. Ramachandran, (Ed.), p. 13-16. Indian Society of Oilseeds Research, Directorate of Oilseeds Research, Hyderabad, India.

Li, D., Mündel, H.H. 1996. Safflower. Carthamus tinctorius L. Ch. 7 in Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Rome, Italy.

Montoya, C.L. 1998. Guía para producir cártamo en Sonora. Folleto para productores 30. INI FAP, Centro de Investigación Regional del Noroeste, Campo Experimental Valle del Yaqui, Ciudad Obregón, Sonora, México.

Montoya, C.L., Ochoa, B.F. 2006. Guía para producir cártamo en Sonora. Folleto para productores 37. INIFAP, Campo Experimental Sur de Sonora. Ciudad Obregón, Sonora, México.

Muñoz-Valenzuela, S., Chanda-Musa, G., Montoya-Coronado, L., Rivera-Rojas, V. M. 2007. Evaluation of safflower genotypes in Northwest Mexico. In: Issues in new crops and new uses. J. Janick and A. Whipkey (Ed.), p. 193-196. ASHS Press, Alexandria, VA.

Musa, G. L. C. 1993. Safflower production and research in Mexico. Sesame and Safflower Newsletter 8, 109-112.

Musa, G.L.C. and Muñoz, V.S. 1990.Registration of Quiriego 88’safflower. Crop Science 30, 961.

Ortega, M.P. y Montoya, C.L. 1998. Cártamo para la costa de Hermosillo. INIFAP, Centro de Investigación Regional del Noroeste, Campo Experimental Costa de Hermosillo, Hermosillo, Sonora, México.

Ortega, R.C. y Ochoa B.R. 2003. El cártamo, una oleaginosa para el mercado de exportación. Revista Claridades Agropecuarias 114: 3-16.

Ortega-García, J., Gámez-Meza, N., NoriegaRodriguez, J.A., Dennis-Quiñonez, O., GarcíaGalindo, H.S., Angulo-Guerrero, J.O., MedinaJuárez,

L.A. 2006. Refining of high oleic safflower oil: Effect on the sterols and tocopherols content. European Food Research and Technology 223(6): 775-779.

Rahamatalla, A. B., Babiker, E. E., Krishna, A.G., El Tinay, A. H. 2001. Changes in fatty acids composition during seed growth and physicochemical characteristics of oil extracted from four safflower cultivars. Plant Foods for Human Nutrition 56: 385-395.

Secretaria de Comercio y Fomento Industrial. 1994. Norma Mexicana: NMX-FF-090-1994-SCFI. Productos no industrializados para uso humano-Oleaginosas-Cártamo (Carthamus Tinctorius L.)-Especificaciones y métodos de prueba. Dirección General de Normas. Secretaria de Comercio y Fomento Industrial. 2005. Norma Mexicana: NMX-Y-176-SCFI-2005. Alimentos para animales-Pasta de Cártamo-Especificaciones de calidad. Dirección General de Normas.

Smith, J.R. 1996. Safflower. P. 357-360. AOCS Press, Champaign, Illinois. Zschau, W. 2000. Bleaching. In: Introduction to fats and oils technology. R.D. O’Brien, W. Farr W., P. Wan (Ed.), 2nd. edition. p. 215–235. AOCS Press, Champaign, Illinois.

BIOtecnia Vol. 11, Núm. 1 (2009) > López-Elías

CRECIMIENTO DE LA DIATOMEA Thalassiosira pseudonana EN CULTIVOS ESTÁTICOS CON ILUMINACIÓN CONTINUA Y FOTOPERIODO A DIFERENTES SALINIDADES

José Antonio López-Elías, Norma García-Lagunas, Laura Rebeca Jiménez-Gutiérrez, Nolberta Huerta-Aldaz

 

Resumen

Se evaluó el crecimiento de Thalassiosira pseudonana en un sistema estático en salinidades de 15, 25 y 35 unidades prácticas de salinidad (psu), a iluminación continua y con fotoperiodo 12 h luz:12 h oscuridad. Los bioensayos se realizaron en matraces de 250 mL por cuadriplicado bajo condiciones controladas de laboratorio, utilizando el medio de cultivo f/2. Los parámetros monitoreados diariamente fueron luz, temperatura, pH y conteos celulares directos cada 12 horas. La variable salinidad afectó la concentración celular y la tasa de crecimiento de T. pseudonana, mientras que los regímenes de iluminación solamente afectaron la tasa de crecimiento máxima y acumulada. La tasa de crecimiento y densidad celular fueron mayores a la salinidad de 35 psu. La tasa de crecimiento máxima fue a la salinidad de 35 psu con 1.71 divisiones día-1 y la concentración celular máxima fue de 555,000 cél/mL en los cultivos con luz continua y 1.0 divisiones día-1 con 477,000 cél/mL en los cultivos con fotoperiodo. Los resultados indican que el crecimiento de T. pseudonana es determinado por la salinidad con un crecimiento óptimo a 35 psu, mientras que a salinidad de 15 psu disminuye drásticamente su crecimiento.

Palabras clave

Thalassiosira pseudonana; salinidad; fotoperiodo; luz continua.

Texto completo:

PDF

Referencias

Andersen, R.A. 2005. Algal culturing techniques. Elsevier Academic Press. USA. 578 pp.

Arroyo-Pacheco, L. E. y Martínez-Baldenebro, F. 1994. Producción de biomasa y composición química de dos especies de microalgas marinas a diferentes salinidades. Tesis de licenciatura. Universidad de Sonora. Hermosillo, México. 78 pp.

Babaro, F. M. J., Fernández J. M., Laborta U. 2001. Influence of preservation techniques and freezing storage time on biochemical composition and spectrum of fatty acids of Isochrysis galbana clone T-ISO. Journal of phycology. 32: 565-572.

Becker, W. 2004. Microalgae forAquaculture: The Nutritional value of Microalgae for Aquaculture. En Richmond A. Handbook of Microalgal culture: Biotechnology and Applied Phycology. Blackwell Publishing. U.S.A. 380-391 pp.

Brown, M.R. Dunstan, G.A., Norwood, S.J., Miller, K.A. 1996. Effects of harvest stage on the biochemical composition of the diatom Thalassiosira pseudonana. Journal of phycology. 32: 64-73.

Castro-Araujo, S., Tavano G.V. 2005. Growth and biochemical composition of the diatom Chaetoceros cf. wighamii brightwell under different temperature, salinity and carbon dioxide levels. I. Protein, carbohydrates and lipids. Aquaculture. 246: 405– 412.

Guillard, R.L. y Ryther, J.H. 1962. Studies on marine planktonic diatoms I. Cyclotella nana Husted and Detonula confervaceae (Cleve) Gran. Canadian Journal of Microbiology. 8: 229-239.

Humprey, G.F. 1979. Photosynthetic characteristics of algae grown under constant illumination and light-dark regimes. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 40: 63-70.

Kirst, G.O. 1989. Salinity tolerance of eukaryotic marine algae. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 40: 21-53.

López-Elías, J.A., Huerta-Aldaz N., EstradaDurán G., Celis-Salgado .M., De la Re- Vega E., Quintero-Arredondo N., Estrada-Quintero J., Niebla-Larreta J., Miramontes-Higuera N., García-Quiroz K., Rodríguez-Niebla J.,

Carvajal-Sánchez I., Velasco-Rameños J. 2004. Efecto de la salinidad en el crecimiento de Isochrysis sp. bajo condiciones de cultivo estático. Biotecnia. 3 (6): 10-15.

Muller-Feuga, A. 2004. Microalgae for Aquaculture: The Current Global Situation and Future Trends. En Richmond A. Handbook of Microalgal culture: Biotechnology and Applied Phycology. Blackwell Publishing. U.S.A. 352-363 pp.

Mansour, M.M.F. y Salama K.H.A. 2004. Cellular basis of salinity tolerance in plants. Environ. Exp. Bot. 52:113-22.

Paniagua-Michell, J., Voltolina, L. D., BückleRamírez L. F. 1989. Manual de metodología y alternativas para el cultivo de microalgas. Informe especial Centro de Investigación Científica y de Educación Superior de Ensenada 2da. Edición. Baja California, México. 70 pp.

Renaud S.M. y Parry D.L. 1994. Microalgae for use in tropical aquaculture II: Effect of salinity on growth, gross chemical composition and fatty acid composition of three species of marine microalgae. Australian Journal of Botany. 51: 703-713.

Rosales, N., Ortega, J., Mora, R., Morales, E. 2005. Influencia de la salinidad sobre crecimiento y composición bioquímica de la cianobacteria

Synechococcus sp. Ciencias Marinas. 31(2): 349-355.

Thessen, A., Dortch, Q., Parsons, M., Morrison, W. 2005. Efect of salinity of Pseudo-nitzschia species (bacillariophyceae) growth and distribution. Journal of Phycology. 41: 21-29.

Tzovenis, I., De Pauw N., Sorgeloos P. Optimization of T-ISO biomass production rich in essential fatty acids I. Effect of different light regimes on growth and biomass production. Aquaculture 2003; 216:203-222.

Viramontes-Robles, F. 1991. Estudio del efecto de diferentes ciclos luz oscuridad sobre el crecimiento y contenido de lípidos en tres especies de microalgas marinas. Tesis de licenciatura. Departamento de Ciencias Químico Biológicas. Universidad de Sonora. 46 pp.

Wikfors, G.H., Ohno, M. 2001. Impact algae research in aquaculture. Journal of Phycology. 37: 968-974. Zar, J. H. 1984. Biostatiscal Analysis. Prentice Hall. New Jersey.

BIOtecnia Vol. 10, Núm. 3 (2008) > Meling-López

ESTRUCTURA POBLACIONAL Y BIOLOGÍA DE LA ARAÑA ESPINOSA (Micrathena funebris Marx, 1898) DEL MANGLAR DEL ESTERO LA CRUZ, BAHÍA KINO, SONORA

Alf Enrique Meling-López, Claudia Isabel Martínez-Camacho, Guadalupe Azucena Duarte-Fuentes

 

Resumen

Las arañas espinosas del género Micrathena son comunes y pueden ser útiles como indicadoras de condiciones ambientales particulares. En el manglar del estero La Cruz de Bahía Kino, Sonora, se encuentra una especie arborícola de este género que no ha sido estudiada, Micrathena funebris, por lo que en este trabajo se determinó la estructura poblacional y algunos aspectos de su biología. Se realizaron colectas y observaciones en campo de septiembre a diciembre de 2006 y de enero 2007 a junio, en transectos transversales al manglar de Avicennia germinans. Las arañas se contaron, se les midió el abdomen y se determinó el sexo. Se encontró que a finales de la época de frío (principios de junio) sólo se encuentran machos y hembras juveniles (no mayores de 2 mm) localizándose en el follaje más cercano al suelo. Durante la época de verano la especie se localizó preferentemente en zonas abiertas entre el follaje del manglar, y apareció con una densidad promedio de 0.41 arañas m-2, mientras que el promedio del abdomen fue de 3.98 mm largo por 2.46 mm de ancho. En septiembre y octubre sólo se encontraron machos y hembras adultos. En noviembre, la población se colapsó hasta 6 ejemplares en diciembre. A finales de primavera de 2007 reinició la población con arañas juveniles (< 1 mm) en las ramas más cercanas al suelo.

Palabras clave

Arañas; Micrathena funebris; Manglar; Estructura Poblacional; Bahía Kino, Sonora.

Texto completo:

PDF

Referencias

Barnes, J. K. 2003. Spined Micrathena. Order: Araneae, Family: Araneidae, Genus and species: Micrathena gracilis (Walckenaer). Arthropod Museum Notes. University of Arkansas, Número 24, octubre 1.

Biere, J. M., y G. W. Uetz, G. W. 1981. Web orientation in the spider Micrathena gracilis (Araneae: Araneidae). Ecology 62 (2): 336- 344.

Bukowski, T. C. y Christenson, T. E. 1997. Natural history and copulatory behavior of the spiny orbweaving spider Micrathena gracilis (Araneae, Araneidae). Journal of Arachnology, 25:307–320.

Decae, A. E. 1984. A theory on the origin of spiders and the primitive function of spider silk. Journal of Arachnology, 12:21-28.

Desender, K. y J. P. Maelfait. 1999. Diversity and conservation of terrestrial arthropods in tidal marshes along the River Schelde: a gradient analysis. Biological Conservation 87:221-229.

Elkaim, B. H. y Rybarczyck, 2000. Structure du peuplement des invertébrés des zones halophiles de la Baie de Somme (Manche orientale). Cahiers de Biologie Marine 41: 295-311.

Hollander, M. y D. A. Wolfe. 1973. Nonparametric Statistical Methods. A Wiley Publication in Applied Statistics. John Wiley and Sons. New York.

Duarte-Fuentes, G. A. y Meling-López, A. E. 2008.Estructura poblacional de la araña, Micrathena funebris, del manglar de de Bahía Kino, Sonora. Presentado en el 1er Congreso sobre la Evolución Geológica y Ecológica del Noroeste de México; 21-23 de abril de 2008. Hermosillo, Sonora.

Gregory, Jr. B. M. 1989. Field observations of Gasteracantha cancriformis (Aranae, Araneidae) in a Florida mangrove stand. Journal of Arachnology, 17:119-120. Gonzaga, M. O. y Santos, A. J. 2004. A new species and a new synonymy in the spiny orbweaver spider genus Micrathena (Aranaeae, Araneidae). Journal of Arachnology, 32:332–335.

Jiménez, M. L. 2007. Comunicación Personal. Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste-CIBNOR. La Paz, Baja California Sur.

Levi, H. W. 1978. The Amercian orb-weaver genera Colphepeira, Micrathena and Gasteracantha north of Mexico (Araneae, Araneidae). Bulletin of the Museum of Comparative Zoology 148 (9): 417-442.

Levi, H. W. 1985. The spiny orb-weaver genera Micrathena and Chaetacis (Araneae Araneidae). Bulletin of the Museum of Comparative Zoology 150 (8): 417-422.

Martínez-Camacho, C. I. y Meling-López A. E. 2006. Estructura poblacional de la araña de manglar Micrathena sp en el estero La Cruz, Bahía Kino, Sonora. 1er Congreso Universitario de Biología en el Estado de Sonora. Hermosillo, Sonora; 27-29 de noviembre de 2006.

Martínez-Camacho, C. I. y Meling-López A. E. 2007. Estructura poblacional de la araña de manglar Micrathena sp en el estero La Cruz, Bahía Kino, Sonora. Presentado en: XI Congreso de la Asociación de Investigadores del Mar de Cortés y V Simposium Internacional sobre el Mar de Cortés. Hermosillo, Sonora, 24-27 de abril de 2007.

Meling-López, A. E., Villalba-Atondo, I. A. y Ortega Romero, P. 1998. Las halófitas de la Laguna Costera La Cruz. Rev. Cons. Suelo y Agua 1: 1-7.

Morales Soto, J. C. 1999. Ciclos diurnos de variables biológicas en Laguna La Cruz, Sonora, México. Tesis de Licenciatura de QuímicoBiológicas. Universidad de Sonora.

Petillón, J., Ysnel, F., Lefevre, J. C. y Canard, A. 2005. Are salt marsh invasions by the grass Elymus athericus a threat for two dominant halophilic wolf spiders? The Journal of Arachnology 33:236-242.

Sabogal G., Alexander y Flórez D., Eduardo. 2000. Arañas espinosas del género Micrathena Sundevall, 1833 (Araneae: Araneidae) de Colombia. Biota Colombiana 1 (3):253-260.

Stratton, G. 2005. Evolution of ornamentation and courtship behavior in Schisocosa: insight from a phylogeny based on morphology (Aranae:Lycosidae). The Journal of Arachnology 33:347-376.

Walker, H. W. y J. Lev. 1969. Elementary Statistical Methods. Third Edition. International Series In Decision Processes. New York.

Zar, J. H. 1984. Biostatistical Analysis. Prentice Hall. 2nd Ed. New Jersey.

JARDINES DESÉRTICOS: UN REENCUENTRO CON NUESTRA IDENTIDAD REGIONAL

JOSÉ JESÚS SÁNCHEZ ESCALANTE

El uso de plantas nativas en los jardines residenciales del Estado de Sonora no debe ser sólo una propuesta para ahorrar agua, también debe ser un medio para que la población sonorense adquiera una identidad con su medio ambiente natural. El llevarlo a cabo es compromiso de todos los sectores de la población: gobierno y sociedad civil.

JOSÉ JESÚS SÁNCHEZ ESCALANTE Investigador del Departamento de Investigaciones Científicas y Tecnológicas de la Universidad de Sonora. Presidente de la Asociación para las Plantas Nativas de Sonora, A.C. Correo: jsanchez@guayacan.uson.mx

Descargar (PDF, 7.83MB)

EL ALIMENTO VIVO EN EL CULTIVO DEL CAMARÓN:

JOSÉ ANTONIO LÓPEZ ELÍAS, NOBLERTA HUERTA ALDÁZ Y FERNANDO ENRÍQUEZ OCAÑA

Una de las actividades comerciales que más ha avanzado en la actualidad es el cultivo del camarón, sin embargo, esta biotecnología carece de un control de calidad eficaz, sobre todo con el uso del alimento vivo (producción y calidad). En el departamento del DICTUS un grupo de investigadores ha trabajado con los cultivos a nivel masivo desde 1990 hasta el 2006 para estudiar las principales técnicas aplicadas en el manejo comercial, la calidad nutricia de las microalgas y la optimización de los cultivos masivos al exterior, además de la contaminación bacteriana en los mismos cultivos.
Dr. José Antonio López Elías,
jalopez@guayacan.uson.mx. Dra. Noblerta Huerta Aldáz, nhuerta@guayacan.uson.mx Dr.Fernando Enríquez Ocaña, fenrquez@guayacan.uson.mx Investigadores del Departamento de Investigación Científica y Tecnológica (DICTUS)Universidad de Sonora.