Estructura y Composición de la Vegetación Ribereña en Zonas Áridas. El Caso de los Ríos Bacanuchi y Sonora en el Noroeste de México

Gilberto Solis-Garza, Horacio Robles-López, Alejandro Emilio Castellanos-Villegas

RESUMEN

La composición y estructura de la vegetación ribereña de los ríos Sonora y Bacanuchi en Sonora fueron determinadas después de la ocurrencia de eventos climáticos extraordinarios.

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Contaminación Potencial por Biosólidos Depositados en un Campo Deportivo

Juana Alvarado Ibarra, Ileem Aguilar Gastelum, Gerardina Nubes Ortiz, Luis Eduardo Velázquez Contreras

RESUMEN

Se presentan los resultados de los análisis microbiológico, huevos de helminto y químico elemental de los lodos que son depositados en el suelo de un campo deportivo y que provienen de una planta de tratamiento de aguas residuales Continuar leyendo “Contaminación Potencial por Biosólidos Depositados en un Campo Deportivo”

BIOtecnia Vol. 18, Núm. 1 (2016) > Armenta Calderón

VARIACION EN EL ESTATUS MICORRIZICO DE LEGUMINOSAS DEL DESIERTO SONORENSE/ MYCORRHIZIC STATUS AND ITS VARIATION ON LEGUMES OF THE SONORAN DESERT

Ana Dolores Armenta Calderón, Eduardo Furrazola Gómez, Sergio Francisco Moreno Salazar, Gloria Irma Ayala Astorga, Andrés Ochoa Meza

 

Resumen

Las leguminosas arbóreas del desierto Sonorense tienen un papel importante como nodrizas de otras especies como cactáceas y arbustivas. Se muestreó la rizósfera de tres leguminosas representativas (Olneya tesota, Prosopis juliflora y Parkinsonia microphylla) durante las cuatro estaciones del año, para evaluar la relación con sus hongos micorrízicos arbusculares (HMA) asociados. Los valores más bajos de colonización micorrízica se encontraron en O. tesota (1.2%) y los más altos los presentó P. microphylla con 57%, estos durante la primavera y otoño, respectivamente. La densidad de esporas varió desde 2,130 a 22,530 esporas/dm3 en P. microphylla y P. juliflora, respectivamente. La biomasa de micelio fue similar en los suelos de las plantas estudiadas, variando desde 27 hasta 414 mg/dm3, registrándose los valores más bajos durante el invierno y alcanzando el valor más alto en otoño. La respuesta estacional de la micorriza mostró diferencias a lo largo del año, siendo la estacionalidad más relevante que la identidad vegetal para explicar la interacción planta-HMA, lo que indica que la asociación micorrízica en estas plantas está definida por una fuerte interacción entre los factores climáticos, edafológicos y biológicos.

ABSTRACT

Leguminous trees of the Sonoran desert, plays a key role as nurse plants for some cactus and shrubs. The rhizospheres of three representative legumes (Olneya tesota, Prosopis juliflora, and Parkinsonia microphylla) were sampled during four seasons, to evaluate the relationship with their associated arbuscular mycorrhizal fungi. The lower values of mycorrhizal colonization were founded in O. tesota (1.2%) and the highest in P. microphylla with 57% in spring and autumn respectively. Spores density ranged from 2,130 to 22,530 spores/dm3 in P. microphylla and P. juliflora respectively. Mycelium biomass in soil was similar among the plants studied, ranging from 27-414 mg/dm3, showing the lowest values on winter and gradually increasing in the following seasons, reaching the highest value in autumn. The seasonal behavior of mycorrhizae showed differences throughout the year, seasonality was the most significant factor to explain the plant-AMF interaction, suggesting that mycorrhizal association in these plants is defined by a strong interaction between climate, soil and biological factors.

Palabras clave

Leguminales; micorriza arbuscular; simbiosis; variación estacional/ Leguminales; arbuscular mycorrhiza; symbiosis; seasonal variation

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BIOtecnia Vol. 18, Núm. 1 (2016) > Cárcamo-Aréchiga

BIOtecnia Vol. 17, Núm. 1 (2015) > Enríquez-Espinoza

PERKINSUS MARINUS EN CRASSOSTREA GIGAS Y CHIONE FLUCTIFRAGA DE BAHÍA DE KINO, SONORA, MÉXICO/ Perkinsus marinus IN Crassostrea gigas AND Chione fluctifraga FROM KINO BAY, SONORA, MEXICO

Tania Lizbeth Enríquez-Espinoza, Reina Castro-Longoria, Fernando Mendoza-Cano, José Manuel Grijalva-Chon

 

Resumen

El ostión japonés Crassostrea gigas es el molusco más cultivado en el noroeste de México, y la almeja negra Chione fluctifraga representa una pesquería comercial emergente, la cual cohabita con C. gigas cultivado en Sonora. Desde 1997, el cultivo de ostión se ha visto afectado por mortalidades en casi todos los sitios de cultivo a lo largo del Golfo de California. Con el fin de evaluar la prevalencia de Perkinsus marinus, un muestreo mensual de 30 ostiones y 30 almejas se llevó a cabo durante un año. Un total de 360 ostiones y 360 almejas fueron analizados por medio de cultivo de tejido en Tioglicolato (RFTM) y por PCR. La prueba de RFTM mostró prevalencias que van desde 3.3 a 60% tanto para ostiones como almejas en todos los meses muestreados y con niveles de infección muy ligero, a moderado, de acuerdo a la escala de Mackin. El análisis de PCR resultó positivo a P. marinus sólo en el ostión que presentó infección moderada en el análisis de RFTM. La sequencia resultante reveló 100% de identidad con la region ITS de P. marinus. Hasta donde sabemos, este es el primer indicio de Perkinsus sp. en la almeja C. fluctifraga.

ABSTRACT

At present, the Pacific oyster Crassostrea gigas is the most cultivated shellfish in northwest Mexico. Nonetheless, other mollusks species such as the black clam Chione fluctifraga, which can be found along with cultured C. gigas in Sonora, represents a profitable emerging fishery resource. Since 1997, the oyster industry along the Gulf of California has been affected by severe mortality episodes disturbing almost all the farming areas. In order to evaluate the prevalence of Perkinsus marinus, a monthly sampling of 30 oysters and 30 clams was carried out during a one-year period. A total of 360 oysters and 360 clams were analyzed by Ray’s fluid thyoglicolate medium (RFTM) and PCR. The RFTM assay showed prevalence ranging from 3.3 to 60% for both oysters and clams through the study period, with infection levels from light to moderate, according to the Mackin scale. The PCR analysis was positive to P. marinus in the only one C. gigas with moderate infection in the RFTM analysis. The resulting sequence revealed 100% identity with the ITS region of P. marinus. To our knowledge, this is the first indication of Perkinsus sp. in the C. fluctifraga clam.

Palabras clave

Perkinsus marinus; Crassostrea gigas; Chione fluctifraga; mollusk diseases; aquaculture/ Perkinsus marunus; Crassostrea gigas; Chione fluctifraga; enfermedades de moluscos; acuacultura.

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BIOtecnia Vol. 16, Núm. 3 (2014) > Martínez-Córdova

USO DE MICROORGANISMOS EN EL CULTIVO DE CRUSTÁCEOS

Luis Rafael Martínez-Córdova, Marcel Martínez-Porchas, José Antonio López-Elías, Luis Fernando Enríquez-Ocaña

 

Resumen

El presente documento es una revisión actualizada sobre el uso de microorganismos en acuicultura que incluye experiencias internacionales, nacionales, regionales e institucionales sobre el tema. Los microorganismos han sido ampliamente utilizados desde hace siglos en diversos procesos para la preparación y procesamiento de diversos alimentos (pan, queso, vino, cerveza, etcétera). Sus usos en acuicultura son relativamente recientes y han sido mayormente utilizados como prebióticos o probióticos para mejorar la calidad del ambiente de cultivo, así como la condición fisiológica, nutricional y sanitaria de los organismos cultivados. Recientemente se les ha encontrado aplicación práctica e importante como biomasa directa para alimentar a camarones y peces bajo condiciones de cultivo. En la revisión fueron destacados aspectos, como la composición nutricional de diversos microorganismos autotróficos y heterotróficos, las estrategias para su manejo y las experiencias de su uso en la acuicultura de diversas especies.

Palabras clave

Acuicultura; bioflóculos; biopelículas; consorcios microbianos; bioremediación.

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Referencias

Alavandi, S.V., Vijayan, K.K., Santiago, T.C., Poornima, M., Jithendran, K.P., Ali, S.A. y Rajan, J.J.S., 2004. Evaluation of Pseudomonas sp. PM11 and Vibrio fluviales PM17 on immune indices of tiger shrimp, Penaeus monodon. Fish and Shellfish Immunology. 17:115–120.

Amon, R.M.W. y Benner, R. 1996. Bacterial utilization of different size classes of dissolved organic matter. Limnology and Oceanography, 41:41–51.

Asaduzzaman, M., Wahab, M.A., Verdegem, M.C.J., Adhikary, R.K., Rahman, S.M.S.. y Azim, M.E. 2010. Effects of carbohydrate source for maintaining a high C:N ratio and fish driven resuspension on pond ecology and production in periphytonbased freshwater prawn culture systems. Aquaculture. 301:37–46.

Audelo-Naranjo, J.M., Martínez-Córdova, L.R. y Voltolina, D. 2010. Nitrogen budget in intensive cultures of Litopenaeus vannamei in mesocosms, with zero water exchange and artificial substrates. Revista de Biología Marina y Oceanografía. 45: 519–524.

Audelo-Naranjo, J.M., Martínez-Córdova, L.R., Voltolina, D. y Gómez Jiménez, S. 2011. Water quality, production parameters and nutritional condition of Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) grown intensively in zero water exchange mesocosms with artificial substrates. Aquaculture Research. 42: 1371–1377.

Avnimelech, Y. 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. 176:227-235.

Avnimelech, Y. 2009. Biofloc technology – A practical guide book. The World Aquaculture Society. Baton Rouge, Louisiana, United States. 182 p.

Azim, M.E. y Little, D.C. 2008The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 283: 29–35.

Balcazar, J.L., de Blas, I., Ruiz-Zarzuela, I., Cunningham, D., Vendrell, D. y Muzquiz, J.L. 2006. The role of probiotics in aquaculture. Veterinary Microbiology. 114:173–186.

Becerra-Dorame, M.J., Martínez-Córdova, L.R., López-Elías, J.A. y Martínez-Porchas, M. 2011. Evaluation of autotrophic and heterotrophic microcosm-based systems on the production response of Litopenaeus vannamei intensively nursed without Artemia and with zero water exchange. Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh, IIC 63: 620.

Becerra-Dorame, M.J., Martínez-Porchas, M., Martínez-Córdova, L.R., Rivas-Vega, M.E., López-Elías, J.A. y Porchas-Cornejo, M.A. 2012. Production response and digestive enzymatic activity of the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei (Boone 1931) intensively pre-grown in autotrophic and heterotrophic microbial based-systems. The Scientific World Journal. 2012:723654

Biddanda, B.A., Ogdahl, M.L. y Cotner, J.B. 2001. Dominance of bacterial metabolism in oligotrophic relative to eutrophic waters. Limnology and Oceanography, 46:730–9.

Blackburn, S. 2004. Water Pollution and Bioremediation by Microalgae: Eutrophication and Water Poisoning. Pages 417429 In: Richmond A. (Ed.). Microalgal Culture: Biotechnology and Applied Phycology. Blackwell Science, Oxford, U.K. 566 pp.

Brown, M. R. 2002. Nutritional value of microalgae for aquculture. In: Cruz-Suárez, L. E., Ricque-Marie, D., TapiaSalazar, M., Gaxiola-Cortés, M. G. y Simoes, N. (Eds.). Avances en Nutrición Acuícola VI. Memorias del VI Simposium Internacional de Nutrición Acuícola. 3 al 6 de Septiembre del 2002. Cancún, Quintana Roo, México.

Campa-Córdova, A.I., Luna-González, A., Mazón-Suastegui, J.M., Aguirre-Guzmán, G. Ascencio, F. y González-Ocampo, H.A. 2011. Efecto de bacterias probióticas en el cultivo larvario del ostión de placer Crassostrea corteziensis (Bivalvia: Ostreidae). Revista de Biología Tropical. 59:183-191.

Chávez-Crooker, P. y Obreque-Contreras, J. 2010. Bioremediation of aquaculture wastes. Current Opinion in Biotechnology. 21:313-317.

Chiu, S. Y., Kao, C. Y., Huang, T. T., Lin, C. J., Ong, S. C., Chen, C. D. y Lin, C. S. 2011. Microalgal biomass production and on-site bioremediation of carbon dioxide, nitrogen oxide and sulfur dioxide from flue gas using Chlorella sp. cultures. Bioresource Technology. 102:9135-9142.

Cotner, J.B., Johengen, T.H. y Biddanda, B.A. 2000. Intense winter heterotrophic production stimulated by benthic resuspension. Limnology and Oceanography. 45:1672–6.

Cotner, J.B. y Biddanda, B.A. 2002. Small players, large role: microbial influence on biogeochemical processes in pelagic aquatic ecosystems. Ecosystems. 5: 105–121.

Das, S., Ward, L.R. y Burke, C. 2008. Prospects of using marine actinobacteria as probiotics in aquaculture. Applied Microbiology and Biotechnology. 81:419-429.

Doshi, H., Ray, A. y Kothari, I. L. 2007 Bioremediation potential of live and dead Spirulina: Spectroscopic, kinetics and SEM studies. Biotechnology and Bioengineering. 96:1051-1063.

Ebeling, J. M., Timmons, M. B. y Bisogni, J. J. 2006 Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia– nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture. 257:346-358.

Ekasari, J., Angela, D., Waluyo, S. H., Bachtiar, T., Surawidjaja, E. H., Bossier, P. y De Schryver, P. 2014. The size of biofloc determines the nutritional composition and the nitrogen recovery by aquaculture animals. Aquaculture. 246-247:105- 111.

Emerenciano, M., Ballester, E.L.C., Cavalli, R.O. y Wasielesky, W. 2012. Biofloc technology application as a food source in a limited water exchange nursery system for pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Latreille, 1817). Aquaculture Research. 43:447–457.

Fiencke, C., Spieck, E. y Bock, E. 2005 Nitrifying bacteria. In: Werner, D. y Newton, W.E. (eds.). Nitrogen Fixation in Agriculture, Forestry, Ecology, and the Environment. Springer. 255-276.

Gatesoupe, F.J. 2007. Live yeasts in the gut: Natural occurrence, dietary introduction, and their effects on fish health and development. Aquaculture. 267:20-30.

Gomez-Gil, B., Roque, A. y Turnbull, J.F. 2000. The use and selection of probiotic bacteria for use in the culture of larval aquatic organisms. Aquaculture. 191:259–270.

Gómez-Gil, B., Roque, A. y Velasco-Blanco, G. 2002. Culture of Vibrio alginolyticus C7b, a potential probiotic bacterium, with the microalga Chaetoceros muelleri. Aquaculture. 211:43–48.

González, L.E., Cañizares, R.O. y Baena, S. 1997. Efficiency of ammonia and phosphorus removal from a Colombian agroindustrial wastewater by the microalgae Chlorella vulgaris and Scenedesmus dimorphus. Bioresource Technology. 60:259–262.

Hemaiswarya, S., Raja, R., Kumar, R. R., Ganesan, V. y Anbazhagan, C. 2011. Microalgae: a sustainable feed source for aquaculture. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 27:1737-1746.

Hoffmann, J.P. 2002. Wastewater treatment with suspended and nonsuspended algae. Journal of Phycology. 34:757–763.

Horowitz, S. y Horowitz, A. 2002. Microbial intervention in Aquaculture. In: Lee, C.S. y O’Brien, P. (eds) Microbial Approaches to Aquatic Nutrition within Environmentally Sound Aquaculture Production Systems, pp. 119–129. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA, Chap. 9.

Jackson, C., Preston, N., Thompson, P. J. y Burford, M. 2003 Nitrogen budget and effluent nitrogen components at an intensive shrimp farm. Aquaculture. 218:397-411.

Koops, H. P. y Pommerening-Roser, A. 2001 Distribution and ecophysiology of nitrifying bacteria emphasizing cultured species. FEMS Microbiolology and Ecology. 1255:1-9.

Kwon, H. K., Oh, S. J. y Yang, H. S. 2013 Growth and uptake kinetics of nitrate and phosphate by benthic microalgae for phytoremediation of eutrophic coastal sediments. Bioresource Technology. En prensa.

Lara-Flores, M., Olvera-Novoa, M.A., Guzmán-Méndez, B. y LópezMadrid, W. 2003. Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acidophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 216:193–201.

Lim, S. L., Chu, W. L. y Phang, S. M. 2010. Use of Chlorella vulgaris for bioremediation of textile wastewater. Bioresource Technology. 101:7314-7322.

López-Tarín, F. 2011. Efecto de la sustitución parcial de una dieta comercial complementada con floc en el crecimiento y la sobrevivencia de camarón blanco Litopenaeus vannamei en un sistema intensivo con cero recambio de agua. Tesis de Maestría. CESUES, México, 60 pp.

Maicá, P.F., Borba, M.R. y Wasielesky, W. 2012 Effect of low salinity on microbial floc composition and performance of Litopenaeus vannamei (Boone) juveniles reared in a zero-water exchange super-intensive system. Aquaculture Research. 43:361–370.

Martínez-Córdova, L.R., López-Elías, J.A., Leyva-Miranda J.G., Armenta Ayón, L. y Martínez-Porchas, M. 2011. Bioremediation and reuse of shrimp aquaculture effluents to farm white leg shirmp, Litopenaeus vannamei: A first approach. Aquaculture Research. 42:1415-1423.

Martínez-Córdova, L.R. Emerenciano, M., Miranda-Baeza, A. y Martínez Porchas, M. 2014. Microbial-based systems for aquaculture of fish and shrimp: an updated review. Reviews in Aquaculture. 6:1-8.

Mridula, R.M., Manissery, J.K., Keshavanath, P., Shankar, K.M., Nandeesha, M.C. y Rajesh, K.M. 2003. Water quality, biofilm production and growth of fringe-lipped carp (Labeo fimbriatus) in tanks provided with two solid substrates. Bioresource Technology. 87:263-267.

Neori, A., Chopin, T., Troell, M., Buschmann, A. H., Kraemer, G. P., Halling, C., Shipgel, M. y Yarish, C. 2004 Integrated aquaculture: rationale, evolution and state of the art emphasizing seaweed biofiltration in modern mariculture. Aquaculture, 231:361-391.

Paniagua-Michel, J. y Garcia, O. 2003 Ex-situ bioremediation of shrimp culture effluent using constructed microbial mats. Aquaculture Engineering. 28:131-139.

Raja, R., Hemaiswarya, S., Kumar, N. A., Sridhar, S. y Rengasamy, R. 2008 A perspective on the biotechnological potential of microalgae. Critical Reviews in Microbiology. 34:77-88.

Rivkin, R.B. y Legendre, L. 2001. Biogenic carbon cycling in the upper ocean: effects of microbial respiration. Science. 291:2398–400.

Samocha, T.M., Patnaik, S., Speed, M., Ali, A.M., Burger, J.M., Almeida, R.V., Ayub, Z., Harisanto, M., Horowitz, A. y Brock, D.L. 2007. Use of molasses as carbon source in limited discharge nursery and grow-out systems for Litopenaeus vannamei. Aquacultural Engineering. 36:184 191.

Sánchez, I.A., Revelo, D.M., Burbano, A.E., García, R. y Guerrero, C. 2013. Eficiencia de consorcios microbianos para tratamiento de aguas residuales en un sistema de recirculación acuícola. Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial. 11:245–254.

Wilde, E.W. y Benemann, J.R. 1993. Bioremoval of heavy metals by the use of microalgae. Biotechnology Advances. 11:781– 812.

Yamashita, T., Yamamoto-Ikemoto, R., y Zhu, J. 2011. Sulfatereducing bacteria in a denitrification reactor packed with wood as a carbon source. Bioresource Technology. 102:2235–2241.